学术干货共聚焦显微镜中荧光团的共定位.docx

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1、学术干货：共聚焦显微镜中荧光团的共定位在多标荧光样品图像中，因两个或多个荧光团在显微结构中距高很近，常常会有放射信号叠加，这种效应就称为共定位。U前，高特异性合成荧光团和经典免疫荧光技术的应用、精密光切技术的应用、共聚焦和多光子显微镜供应的数字图像处理技术等大大提高了生物样品中共定位检测的实力。Co1.oca1.izationofActinandVincu1.ininNorma1.TahrOvaryCe1.1.s图1共定位在生物表述上是这样定义的：两个或多个不同的分子位于样品上同个物理位置。对显微镜中看到的组织切片、单个细胞或亚细胞器官，共定位意味着不同的分子连接到同一个受体上：在数字图像方面

2、，这个术语指的是不同荧光分子放射的颜色共享图像中的同个像素.在共聚焦显微镜中，样品被记录成含有很多像元的多维阵列数字图像，每个像元代表一个三维像素像元的尺寸（或检测单元）由物镜的数值孔径、照明波长以及共焦检测针孔直径等确定。因此，在一个样品中两个荧光探针的共定位,比如发绿光的A1.exaF1.uor488.发橘红色光的Cy3.在图像中就是由含有红色和绿色两者贡献的像索表示（常常产生各种各样的橘色和黄色）。举个例子，图1的系列图表明门骨骼肌动蛋白和黏若斑蛋白侧向光学平面上的共定位（激光扫描共聚焦显微镜中的XY而）。这些共定位点可作为肌动蛋白丝的成核位点，也可作为外部介质、质膜和肌动蛋白骨架之间的

3、交联剂。图1（a）是A1.exaF1.uor568通道（目标对象是黏若斑蛋白），由543nm的剑灰激光器激发：而FigureKb）是A1.exaF1.uor488通道（目标对象是丝状肌动蛋白），由488nm的氮离子激光器激发：Figure1.（C）是前面两幅图的叠加，表明两种荧光信号在丝状肌动蛋白纤维末端的共定位。必需指出的是，共定位并不指的是具有相像放射光谱的荧光团出现在合成图像的同一个像素上。精确的共定位分析只有在荧光团的荧光放射光谱足够分别且港色片（或光谱狭缝宽度）正确设置的状况下才有可能。荧光团放射光谱之间的大量叠加或油色片组合的不正确运用，都可能导致光谱串色，这种状况下共定位的测量就

4、没有意义。为了避开产生共定位假象，荧光团必需与照明光源的光谱细致匹配（共聚俵中是激光线），来获得最大激发效率,，同时在放射光谱之间保持肯定的分别度。在大多数状况对共定位分析来说，荧光团的选择对获得满足结果极为重要。在图2中，对A1.exaF1.uor染料家族的光谱叠加作了比较,这在共定位试验中是很有用的。为了比较，全部的放射光谱都做了归一化，德加区域用灰色阴影显示。在图2（八）中,绿色荧光染料A1.exaF1.uor488和橙黄色荧光染料A1.eXaF1.Uor555在峰波特长显示很明显的分别，人眼也很简洁能够区分。然而,光谱叠加(灰色阴影区域)表明在A1.exaF1.uor555的放射峰上很

5、明显有A1.exaF1.uor488的放射光谱(用一条黑线标示，从放射峰到横坐标)。当A1.exaF1.uor488的荧光放射强度明显比A1.exaF1.uor555的荧光放射强时，荧光信号这么高程度的串色使得荧光探针的分别很难。很多因素都会导致这种状况发生，比如荧光团标的物浓度的巨大节异。因此，在共定位试验中，这些探针的组合就应巧避开，或只有当图像在多通道共焦模式采集卜才可以运用，这样可以降低或消退串色。图2A1.exaF1.uor探针之间的光谱强加程度会随着探针放射峰之间的距离增加而卜,降，如FigUre2(b)所示。在这种状况下,A1.exaF1.uor488和深红色染料A1.exaF1

6、.uor633与FigUre2（八）比较，重叠区域明显降低。这两种染料人眼都很简洁区分，光谱重叠程度低在共定位试验中可使用色最小化，如每个探针的浓度相像的话，应节可以产生较好的结果（留意：深红色的荧光染料A1.exaF1.uor633在低浓度时通过显微镜目镜很难视察到）A1.exaF1.uor633可被红色银灰激光器的633nm线最有效的激发，也可被黄色氨笈激光器的594nm激发。或许，在A1.eXaF1.UOr染料放射的可见光区域，最好的光谱分别是A1.exaF1.uor488A1.exaF1.uor647的结合（图中未显示）。事实上，在这些染料之间没有光谱重叠，即使样品含有过量:的A1.e

7、XaFIUOr488,应当也没有串色。具有这些特点的荧光探针是共聚焦显微镜分析共定位的志向选择。在共聚焦显微镜中，测定共定位的实力受限于光学系统的辨别率及用于照明样品的入射光波长。宽场荧光和共聚焦显微镜理论辨别率约为200nm,但在事实上，由于各种缘由这个数降到400nm和600nm之间，缘由包括显微镜光路未完全对准、光学折射率波动、光学像差及样品制备的不合适。然而，对于个已经完全调好的共聚焦显微镜来说，两个荧光分子是否连接到同一个目标对象上，或者它们是否定位在同一个器官上受光学辨别率影响。共定位的很多试验是围绕高特异性的合成探针和抗体进行的，标记目标是简洁区分的局部的、明确的细胞结构。对于厚

8、度小于5m的样品，比如贴壁细胞或很薄的组织切片，在常规的宽场荧光显微镜卜.，定量的共定位分析般是可以的。然而，对于厚样品，图像应以具有肯定轴向尺寸的光学切片来记录，来分析看起来共定位的荧光团是否真正位于同个恻向焦平面上，或在Z轴上他们是否彼此叠加。厚样品的荧光团共定位分析应通过获得薄的光学切片来进行，可用激光扫描共聚焦显微镜、或转盘共聚焦显微镜或多光子显微镜。多光子显微镜常常用单个近红外激光，在物镜焦点处的特定区域激发双标样品的两个荧光团。这些技术将荧光放射局限在仅位于焦平面上的荧光团，这样大大降低了光漂白和背毋噪音。共定位的软件分析样品中荧光团共定位的程度是通过比较一幅图上每个像素位置的颜色

9、值测定的“分析的第步就是要显示进行共定位测量的图，般以两个独立通道的合成图显示。当分析多标样品时，在一次计算中，只能处理两种伪彩，但全部伪彩排列之后都可以配对用于共定位分析。由于传统上运用悬离子激光器、氧-氮离子激光器及氮至激光器，这些激光器能够有效地激发在蓝色和绿色区域有剧烈汲取的荧光团，因此选择红绿颜色对作为共聚焦荧光颜色。此外，人眼对绿色和红色色调更为敏感。图像的共定位分析一般常常用散点图表示（scatterp1.ot）,这个图将两套数据关联起来。散点图以二维图的形式描述了幅图或个感爱好区域每个像素处一个通道对另一个通道的强度值（见图3和图4）o作图时其中个通道（通常是绿色）作为X轴，而

10、另个通道（通常是红色）作图时作为y轴，在横坐。标和纵坐标上强度范围是。4095.因此，合成图的每个像素点都有对强度值。分析每一对强度值产生的分布图案，能够识别荧光团的共定位、区分背景、串色、光漂白等。图3图3描述了共聚焦的三个合成图（伪彩为红色和绿色），以及对应的散点图，三个样品荧光团共定位的程度不同。每个通道中强度很低的像素位靠近散点图的（0.0）处，而越亮的像素分散得越远。在连接红色通道和绿色通道的散点图中，纯的红色和绿色的像素点往往会团聚在轴位置。而共定位的像素（假如有的话）看起来是彩色的，具有黄色和橙色的色调（取决于共定位的程度），落在y=x位宜旁边，也就是散点图的右上附。图3a显示的

11、样品为鼠脑冠状位海马切片，用A1.exaF1.uor488标记神经纤维，A1.exaF1.uor568标记神经胶质原纤维酸性蛋白，GFAP,在图3b中，印度鹿鹿皮肤成纤维细胞用A1.exaF1.uor568染色，标记对象是黏若斑蛋白，同时用A1.exaF1.uor488与鬼笔环肽作用，标记对象是纤维状的肌动蛋白。而表达荧光蛋白DSRed和EYFP的免肾上皮细胞，定位在核上，在图3c中描述。相关的散点图干腌位于样品图像的面，例如图3d是图3a的散点图,两个通道共定位的程度在每个散点图的左下角用白色字母和数字表示。图3a共定位程度相对较小（只有百分之几），在图3b和图3c中共定位程度渐渐增加，共定

12、位系数分别是30%和85%。共聚焦显微镜及配件制造商供应的软件可对荧光团共定位进行散点图分析。图4显示了系列分析图，这个图是印度鹿鹿皮肤成纤维细胞，用A1.exaF1.uor568染色（标记对象是黏着斑蛋白，红色通道），同时用A1.exaF1.UOr488染色（标记对象是纤维状肌动蛋白，绿色通道。在散点图中选择一个感受好区域进行分析，在图4a中用白颜色的长方形为这个感受好区域设定了信号的阈值，大多数共定位分析软件都可以进行这种功能分析。感爱好区域的水平边界和竖直边界应当解除背景信号，背景沿着散点图的X轴和y轴团簇。只有被包括在所选择区域边界内的像素信号才能进行共定位分析。样品上重段的像素区域很

13、简洁转变成共定位二元阈值像（图4b）,这个图还可以和共聚焦图叠加在起，做一个共定位map.图4c显示的共定位map图用白颜色显示了共定位区域，对大多数软件这个颜色很简洁变成其他颜色，相对于原来的伪彩，对比度更高些。图4正如上面所探讨的，在共聚焦图中对荧光团共定位的定量测定，可通过散点图和感爱好区域的信息获得。从整个散点图的信息，可获得很多变量值,PearsonrS系数就是用于分析整个散点图的诸多变量中的一个，为描述两场图之间垂荏程度，在以别一场图像和另一幅图像的匹配程度上，PearsonrS1R(r)系数是标准技术之一。Pearson,s相关系数依据下面方程计算：Z(SvS1.I),Jv(s,

14、*,-1,S1是第一个通道每个像素的强度值，而S2是其次个通道每个像素的强度值。S1(average)和S2(average)分别是第一个通道和其次个通道平均像素强度值。在PearsonfS系数里，原始像素强度值减去平均像素强度值。结果，系数值范围从-1到1,-1表示图像的像素之间完全没有垂在，而1表示完备的图像重叠。PearsorVs相关系数只说明白两个图像之间形态的相像性，而与图像像素强度值无关。然而，当把这个系数值应用到共定位分析时，潜在的负值难以说明，须要用另一种方法说明结果。用于计算另一相关系数的较简洁的技术，须要去掉原始像素强度值和平均像素强度值这个差减项。正式定义为OVerIaP

15、系数(R),这个值范国从。到1,在图像分析中对强度改变不敏感。Over1.ap系数定义为:S1S2,R三V(s3,*s23,ii(2)分子是两个通道强度的乘积和，只有当同一个像素的两个通道值与共定位相关时，分子才会给出,个很有意义的值(两个通道的像素强度值都大于0)。因此，方程(2)的分子与共定位的像素数成正比。同理，Over1.ap方程的分母正比于图像两个通道组分的像素数，而不考虑共定位是否存在(用意：组分定义为通道1和通道2红颜色和绿颜色的图或像素阵列兀Over1.ap系数的个主要优点就是对个图像上各种组分的信号强度差相对不敏感，信号强度差常常是由荧光团的浓度差、光漂白、量子效率改变及非等

16、效的电子通道设置等产生的。运用OVerIaP系数最重要的缺点是：通道之间组分像素数比例会剧烈影响C)Ver1.aP系数值C为了削减这种依靠性，Over1.ap系数分成两个不同的子系数，看k(1)和k(2),以两个独立的参量来表达共定位的程度。n,EviOver1.ap系数k和k(2)描述了通道之间强度的差异，k(1)对通道2(绿色信号)强度差敏感,而k(2)线性依靠于通道1像索的强度值。因此，现在描述的方程能够说明重叠度，也能说明颜色通道之间的强度差异。在图像的共定位区域，为了估计其中个颜色通道对整个共定位荧光的贡献，定义了另外,套共定位系数m和m(2)s工以一m-：mRII共定位系数m(1)

17、用描述通道1对共定位区域的贡献，而共定位系数m(2)用于描述通道2村共定位区城的贡献.留意，如S2(i)大于0时，变量S1(i,81.oc)等于S1(i)：对于变量S2(i,co1.oc)也是这样的。相对于每个荧光通道的总荧光盘来说，这些系数正比于merge图像中每个荧光通道共定位荧光团的荧光量。即使当两个荧光通道的信号强度明显在不同的档次，共定位系数m(1)和m(2)也能测定。另一对共定位系数可对散点图上定义的感爱好区域内像素强度范围进行计算。系数M(I)用于描述通道1荧光团对共定位区域的贡献，系数M(2)用于描述通道2荧光团对共定位区域的贡献.ES1.1.M-2M._(5),“RII式中，

18、如S2(i)位于感爱好区域阈值范围内，S1(i,CoIoC)等于S1.(i)；如S2(i)代表的像素在感受好区域网值外，S1(i,co1.oC)等于。.相像地，如SUi)位于感爱好区域阈值范围内，S2(i,Co1.OC)等于S2(i)；如S1(i)代表的像素在感爱好区域阈值外，S2(i,co1.oc)等于0.换句话说，对每一个通道来说，分子代表这个通道全部像素(且每个像素在另个通道也有强度值)的强度和，而分母代表这个通道的全部像素的强度和。相对于每个通道的总荧光量来说，这些系数与每个通道共定位对象的的荧光量成正比。大多数商业共定位分析软件都能计算上面所描述的参数，包括Pearsons相关系数、

19、总over1.ap系数以及k(X),m(X)和M(X)共定位系数。此外,很多分析软件包含的算法可进行背景校正，产生整幅图的散点图，且可在一个双通道合成图或共聚焦图的感爱好区域进行计算。从这些软件中获得的最垂要的数据就是共定位系数，这意味着信号之间重叠的相对程度。例如，通道1的荧光团共定位系数为0.75意味着通道1中含有通道2组分的强度值占通道1总的强度值是75%t,这是一个相对比较高的共定位程度。同样地，对通道2共定位系数为0.25意味着明显降低的共定位。共定位分析中的假象及样品考虑共定位分析遇到的一个最重要的问题就是由放射光谱强加、自荧光（主要存在于组织样品）、非特异性抗体或合成荧光染料染色

20、引起的光谱串色。荧光共振能量转移对于光谱有强加的共定位荧光团来说也是一种潜在的假象。当视察标记有绿色、红色荧光探针的样品时，任何这样种假象都能产生看起来是黄色或橙色的像素，但这种颜色并不来自共定位。当对两种或两种以上荧光染料标记的样品进行成像时，最常见的问题就是荧光串色问题。例如，当用传统的绿色和红色荧光探针荧光索和罗丹明进行双标时，串色只有用最优的荧光港色饯组才能降低，但绝不会完全去掉。这是因为这样个事实：这些染料都有很宽的汲取和放射光谱，光谱之间有明显的重段。因此，激发荧光素的氨离子激光器的488nm线也能激发罗丹明，尽管激发程度较低。而且，在为罗丹明预设的光电倍增管通道或宽场滤色镜套组中

21、也会检测到荧光素的荧光放射，甚至在没有共定位的地方，产生看起来是黄色或橙色的像素，要用这些染料或类似染料进行共定位试验时，串色问题必需完全消退。成探针克服，比如A1.exaF1.uor系列或Cy系列染料。这些特地设计的有机分子表现出很窄的放射光谱（与传统探针相比）、与孤光灯和激光线相匹配的较大的汲取系数、较高的量子产率、降低的光漂白,且荧光放射对环境变量的依靠性较低。此外，这些先进探针的激发光谱线横躅大约400nm,从紫外到近红外有一个很宽的选择，以匹配照明光源，使得放射光谱叠加最小。自发荧光（对甲醛固定的组织样品尤为显著）产生的问题在表现上与串色类似。有自发荧光的样品激发后常常会在其他通道检

22、测出荧光放射，使得到的照片看起来有共定位荧光团。如用抗体和合成荧光团对背景过度染色，也会在两个荧光团非特异性标记明显的地方产生看起来像共定位的图像。这个假象可以通过细致地制备样品、用合适的contro1.监测试验方案来避开或明显降低。只有当全部的事色、自发荧光、非特异性荧光问题都消退掉后，共定位的探讨才是精确的。在激光扫描共聚焦显微镜中，最有效的方法就是利用序列激发，并用窄的带通放射源色片或窄的狭缝宽度（光谱型）收集放射荧光。同时，应当检查单标的contro1.样品,以确保完全消退了串色,未染色的contro1.在监测自荧光方面是很有效的。图5激光扫描共聚焦显微镜中各种样品中色的问题及其校正在

23、图5中显示。图5（a）中的纤维原细胞,A1.exaF1.uor488绿色荧光串色进入MitoTracker红色通道，当样品用488激光和543激光同时扫描时,会产生黄色的肌幼蛋白丝。序列扫描和检测（图5d）消退J串色影响。同样地,在用Cy3和核探针DRAQ5对老板大肠厚切片进行同时扫描时（图5b）,也会发生串色。序列扫描可以去掉串色假象（图5e）,而串色假象会造成虚假的共定位。当多标样品用两种以上的激光扫描时，串色问题在好几个通道都会视察到，图5(C)和图5显示了成脑的个厚切片,用A1.exaF1.uor488标记神经丝、用A1.exaF1.uor568标记神经胶质纤维酸性蛋白(GFAP),用

24、DRAQ5染核。当样品同时用3个激光扫描时(图5C),串色会在其次和第三个通道发生，在样品的中间丝里就意味着有可能的共定位。然而，若起先用序列扫描并收集数据时，神经丝只出现在它们各自的通道里(图5f),消退了这些结构中荧光团共定位的可能。荧光共振能量转移(FRET),理论上可以测量位置离得很近的两个荧光团的距离，也是监测共定位的个潜在有用的工具。然而，在共定位分析中这个现象常常会导致一些假象,除非在试验的设计过程中，对FRET的些参数做了很好地理解并细致进行了考虑。尤其是在第一个荧光团的放射光谱和其次个荧光团的激发光谱重叠的地方，探讨者应当特殊关注。这些样品中的能量转移表现为：第一个荧光团的荧

25、光放射意外地降低同时伴随着其次个荧光团的荧光放射意外地增加,紧密相关的荧光团之间的相互作用可导致放射荧光信号的淬灭，这与环境条件有关。共定位分析中很多潜在的问题都可通过细致关注样品制备技术来规避。正如上面探讨的，荧光探针应当选择放射光谱分别比较大的且具有最小叠加的组合。假如可能的话，选择绿颜色的具有窄放射的荧光团(比如AIeXaF1.uor系列或量子点)及红颜色的在深红区或近红外区有放射的荧光团。原发性和继发性抗体必需检测交叉活性及非特异性背景染色。合成荧光团及标记的继发性抗体的浓度应当优化以确保相像的亮度，尤其是当对象丰度根木不同时。影响荧光团亮度的因素包括激发效率、量子产率、消光系数、浓度

26、及环境因素，如PH值、离子浓度、疏水性及粘性。对每个荧光团都应单独制备contro1.样品，在不染色的状况下，分别分析串色和自荧光。细致留意着色过程中的微小细微环节，就会降低运用图像处理软件且原数字图像的必要性。共定位分析的实际状况在分析困难的荧光图像时，运用伪彩色组合很有用，这在上面已经探讨过了。通常，选择两个彩色通道，最常用的是绿色和红色。因此，强加区域显示黄色。其他颜色对，比如蓝色、绿色（产生青色），蓝色、红色（产生紫色）也会用到，但因为反射的蓝光对人眼灵敏度低，这些颜色对在实际视察中很少运用。但在很多状况下，尤其是三色图像，不行避开会运用蓝色伪彩色。采集图像及故示参数方面，应当采纳一种

27、标准以便使合成图对每一个荧光信号显示同样的动态范围和补偿。事实上，标准的共聚焦显微镜操作将这种方法视为日常样品分析方法。两个图像merge时，假如收集到的光子足够，叠加的红色绿色信号就会产生明确的亮黄色。在光子极少的试验中，共定位荧光团会产生暗黄色，而对背景具有相同贡献的绿色和红色会显示棕色。每个通道的offset和gain都应当单独调整（设置背景为0.饱和为4095），以便每一个荧光团都显示在完整的12位范围里。然后,对每个图像进行单独处理。尽管这是采集和显示多色图像的一个很便利的方法，但样品中两个信号的实际相对强度没法测定，因为每个信号的采集都是为r满足整个12位的图像深度。因此，某一个颜

28、色通道相对信号强度的分析要求各个通道以同样的采集参数配置，比如光电倍增管电压、增益和补偿等。假如图像采集和图像处理技术没有平衡好，在merge的彩色图中，就会由于采集过程光电倍增管不合适的Gain,offset配置及图像处理过程中强度直方图的极端拉伸而对共定位做出不精确的说明。举个例子，假如offset值过高，就会发生很明显的颜色分别，在低OffSet值卜.，在同样的结构下，视察到的对比度就降低。对于一些关键应用，rati。成像技术可用于区分两个信号是共定位还是只是部分叠加。图6对完全校准好的荧光成像系统，当用不同的滤色镜组时，样品上个点在检测器上精确成像为一个点，也就是像素对像素。然而，不同

29、颜色的通道merge时，物镜的色奉校正不够、泄镜光路没有完全对准都会使得荧光信号之间的记录有差错。对具有困难图案的图像或明暗信号相混的图像，这个可能就检测不到。会得出这样的结论：在结构中的信号分布要么是明显不同，要么是部分叠加的。在merge图像的处理过程中，位移问题可用很多软件包通过panning操作发原原始记录。通过panning操作校正系列不同颜色图的过程中，须要样品上有一个固定的参考点，这个参考点在每一层图上都有。如不存在多标的样品参考点，就将多色的荧光微球稀释后加入样品中，用盖玻片进行封装前，在每个视野中都会有几个珠子。对于一些苛刻的应用，几个带通二色镜和放射滤色片可与不同的激光器或

30、荧光团特定的激发滤色片一起运用。这种港光镜组的配置一般用在共聚焦显微镜中，当对颜色校刚要求苛刻时，也可用于宽场荧光显微镜。图6显示了上面探讨的几个常见问题，多标样品(留意：图6中全部荧光团都只显示绿色和红色两种伪彩)常常会阻碍共定位的精确分析。用增加黄色荧光蛋白融合过氧化酶转染人类女性骨肉瘤上皮细胞，目标对象是缩氨酸序列(发绿色荧光)，随后用免疫荧光的方法，用二次抗体标记AIeXaFIUor568(发红光)，目标对象是过氧化酶膜蛋白(PMP-70),显示在图6(a)和图6(d)中。图6(a)中的背景太黑，致使标记的黄色荧光蛋白强度降低。这种错误使共定位分析发生偏移，对绿色通道中重段的像素人为产

31、生了较低的检测量。合适的图显示在图6(d),显示了明显较高的共定位程度。熟猴肾上皮细胞的线粒体网络用EYFP和HcRedI荧光蛋白(此蛋白含有缩氨酸序列，目标对象是线粒体)转染。成像过程中，特别亮的EYFP大大地遮盖了HCRedI放射的荧光信号，当检测通道的电压、增益和补偿值接近时，HcRedI放射的荧光信号比EYFP要弱几乎100倍(图6(b).调整HcRedI通道PMT的值可平衡荧光蛋白的放射强度以克服这种差异，共定位程度明显增加(图6(e)。图6(c)显示几个段加通道重合不好，图中显示的是塔尔羊卯巢细胞，用A1.exaF1.uor488耦合鬼花环肽染色（目标对象是绿色丝状肌动蛋白），用A

32、1.exaF1.uor568二次抗体染色，目标对象是粘若斑蛋白抗体（粘着斑）。肌动蛋白丝末端应当与样品中粘若蛋白共定位，但在图6（O中，他们没事合好，正如在图像右下角用红色和绿色荧光团标记的微球重合不好一样。采集完图像后，进行图像处理可将通道对齐，复原图像的位置（也就是球的位置），为共定位分析供应了很好的样木。结论当探讨荧光团共定位时，要考虑的最重要的点是：确保样品标记的质量最好。抗体和合成荧光团都应进行特异性的分析和选择，背景要低、没有交叉活性。为了降低申色影响，放射光谱分得比较开的荧光探针组合最适合做共定位试验。要做合适的contro1.试验，包括用每个探针单独标记样品及未标记的只有自发荧

33、光的样品，都应当制备，而且在真正的试验条件下细致地视察串色。样品制备好后，仪器和软件的参数都要关注。有一点很用要，要记住：样品制备得不好并不能通过数字图像处理技术克服。在大多数状况下，优化染色条件会节约大量的时间，最终产生较好的结果。进行共定位分析还取决于仪器的配置要求，须要最高质量的消色差显微镜物镜，这对于降低色格是很必要的，色差会影响共定位的定量计算。很多生产产商引进J平场更消色差物镜，这种物镜对色差在整个可见光范围内（400-700nm）进行校正，可明显有助于荧光显微镜的定量探讨。全部的荧光放射滤色片都应当用与荧光团放射光谱匹配的带通透射来优化。这是限制样品中其他荧光团串色最重要的考虑之一。假如在contro1.样品中检测到串色(用单探针染色或未染色只有自发荧光)，用装有AOTF(acousto-optictunab1.efi1.ter)的显微镜进行多通道序列扫描会产生最优的结果。弁考文献1. O1.ympusMicrocopyresourcecenter2. HandBookofBio1.ogica1.Confoca1.Microscopy(THIRDEDITION)JamesB.Paw1.ey